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2022-11-028552 次浏览
细胞侵袭和迁移

实验准备: 细胞 ,24孔板 ,细胞小室(8μm ,24孔板专用) ,ECM Gel ,10%FBS+培养基 ,无血清培养基 ,10 μ、200 μL、1000 μL移液器及配套枪头 ,1.5 mL EP管 ,冰盒  


实验设计:

实验分组一般分为

阴性组(上下层均没有趋化因素) ,

实验组(凭据实验需要 ,上层或者下层加入趋化因素) ,

比照组(趋化因素与实验组中的相反)。如果有特别需要 ,可以再加上

阳性组(上下层都有趋化因素)。 


实验操作(请细读注意事项): 

一、细胞侵袭实验 

1.ECM Gel原液提前1 h放在4 ℃冰箱中解冻 ,实验前转移到冰盒中。 

2.将1.5 mL EP、枪头盒、细胞小室放在24孔板里面后 ,置于冰上预冷。 

3.凭据自己的使用量 ,凭据ECM Gel : 无血清培养基=1 : 7.5在冰上稀释成使用液。

4.把枪头剪去一小段(约3 μm)后在冰上吸取40 μL/孔ECM Gel使用液轻轻加入小室上室中 ,加入时慢慢移动枪头 ,包管液体平铺在底部。 

5.放在37 ℃孵箱15 min ,让胶凝固。 

6.消化、离心、计数细胞后 ,凭据2.5x10^4 / mL用无血清培养基稀释细胞 ,制成细胞悬液(如果细胞许多 ,这一步可以提前 ,在4、5之前做)。 

7.凭据每孔200 μL ,将细胞悬液加入小室上室 ,同时在小室下室加入10%FBS+培养基500 μL ,放入37 ℃孵箱培养。

8.若干小时后取出 ,吸去小室上室多余液体 ,用PBS清洗两次 ,用棉棒在上室中轻轻转动 ,吸干水分并擦去膜内侧的细胞。 

9.在上室中加入结晶紫染液 ,染色5 min ,接纳染液 ,用流水徐徐冲去染液 ,再次用棉棒在上室中轻轻转动 ,吸干水分。 10.在正置显微镜上安排一块载玻片 ,将细胞小室的小孔倒置放在上面 ,拍照。

11.在100倍视野下 ,对膜的上下左右及中间计数 ,做平均数。

 

二、细胞迁移实验

细胞迁移实验不需要ECM Gel包被 ,其余办法一致。


实验原理:多孔膜是聚碳酸酯膜(polycarbonate membrane) ,膜带有微孔 ,孔径巨细有0.1-12.0 μm。将细胞小室放入对应的培养板中 ,小室内称上室 ,培养板内称下室 ,上室内盛装上层培养液 ,下室内盛装下层培养液 ,上下层培养液以聚碳酸酯膜相隔。将细胞种在上室内 ,由于聚碳酸酯膜有通透性 ,下层培养液中的身分可以影响到上室内的细胞 ,从而可以研究下层培养液中的身分对细胞生长、运动等的影响。


细胞迁移和侵袭实验常用8.0μm膜 ,上室种肿瘤细胞 ,下室加入FBS或某些特定的趋化因子 ,肿瘤细胞会向营养身分高的下室运动 ,从而从多孔膜一侧穿过 ,贴壁于多孔膜的另一侧 ,计数其细胞量可反应肿瘤细胞的迁移或者侵袭能力(圆形透明小孔为微孔)。(注:迁移和侵袭是两个看法 ,迁移是指细胞的运动能力 ,而侵袭是细胞在运动的同时会排泄出消化ECM的卵白 ,清除运动障碍 ,这个实验更能模拟人体内情况) 


注意事项 

1.ECM Gel(货号:E1270)由Sigma公司生产 ,来源于大鼠肉瘤的细胞外基质提取物 ,生保存-20℃ ,由于在室温中会快速凝固 ,不可逆 ,因此需要在冰上溶解和操作 ,同时一切要与ECM Gel接触的耗材也需要预冷 ,制止俩者接触时温差较大引起ECM Gel凝固粘附 ,造成浪费。 

2.制作ECM Gel使用液时 ,先加入培养基 ,再加入ECM Gel;同时在使用量的基础上多配置5-20 uL(使用量多就多配点) ,制止液体挂壁造成最后一次加样不敷。 

3.加胶时 ,胶的量以恰好把胶浸湿为最好(24孔的millicell需要35-40uL) ,过厚细胞侵袭变慢 ,过少则失去侵袭实验的意义;完成后可轻轻地 ,均匀地拍打培养板四个侧面 ,让液体完全平铺 ,这样可以制止因为胶的厚薄不均而引起的误差。 

4.凝固时间可以适当延长 ,但最好不要凌驾30min ,避免液体挥发使gel凝固得过硬。

5.通常先凭据细胞的侵袭能力预计每孔小室加入的细胞数量 ,侵袭能力强的细胞(如231 ,CAF)每孔加入5,000个 ,那最后的细胞悬液应该制备成2.5x104/mL ,而侵袭能力弱的细胞(如MCF-7)可以提高细胞数量 ,抵达10,000个 ,那最后的细胞悬液应该制备成5x104/mL。上层加入细胞悬液后可轻轻地 ,均匀地拍打培养板四个侧面 ,让液体完全平铺 ,制止细胞漫衍不均而引起细胞计数时中间多两边少。 

6.加入下室中的10%FBS是作为趋化因子诱导细胞运动 ,24孔板下室一般加入500μl含FBS的培养基 ,差别的培养板加的量有差别要求 ,具体请参考说明书。这里要特别注意的是 ,下层培养液和小室间�;嵊衅荼� ,一旦爆发气泡 ,气泡处的趋化作用就减弱甚至消失了 ,在种板的时候要特别留心 ,小室在放入时倾斜缓慢放入(注意小室中的液体不要流出) ,可以制止气泡。培养时间需要自己凭据文献做预实验 ,寻找合适的时间点;时间点的选择除了要考虑到细胞细胞侵袭力外 ,细胞数及处理因素对细胞数目的影响也不可忽视 ,穿过的细胞数在100-200之间最好。棉签清洗时一定要轻柔 ,避免戳破多孔膜。 

7.结晶紫是细胞核染液 ,细胞巨细差别 ,染色时间也有改变 ,染液安排的时间和浓度也会对染色时间有影响 ,需要自己掌握;最优的染色状态是细胞核颜色深 ,胞浆色浅。

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